70. Was sind die Vorsichtsmaßnahmen für die bestehende Chlorbestimmung?
Chlor ist in wässriger Lösung sehr instabil, insbesondere bei niedrigen Konzentrationen, und der Gehalt nimmt schnell ab. Die Reduktionsrate von Chlor wird beschleunigt, wenn sie Sonnenlicht und anderen starken Licht ausgesetzt oder aufgeregt ist. Daher kann die Probe nach der Probenahme nicht gespeichert werden, und die Chlorbestimmung muss sofort begonnen werden, während die Lichtbelastung und Aufrüstung der Wasserprobe vermieden werden.
Alle Operationen während des Bestimmungsprozesses müssen eine direkte Exposition von Sonnenlicht vermeiden, und es ist am besten, mit der niedrigstmöglichen Temperatur und einem weichen Licht durchgeführt zu werden. Darüber hinaus erfordern alle kolorimetrischen Methoden Farb- und Trübungsblanks, um die Farbe und Chromatizität des Rohwassers auszugleichen, insbesondere wenn die Trübung und die Chromatizität hoch sind, muss der Blindwert bestimmt werden.
Bei Verwendung der o-Tolidin-visuellen kolorimetrischen Methode zur Bestimmung des Restchlors ist das gemessene Ergebnis das freie Restchlor. Wenn die Wasserprobe 10 Minuten lang an einem dunklen Ort platziert wird, um die höchste Chromatizität zu erzeugen, bevor die kolorimetrische Methode durchgeführt wird, ist das Ergebnis das gesamte Restchlor. Das gesamte Restchlor abzüglich des freien Restchlors ist das kombinierte Restchlor.
Bei Verwendung der o-tolidin visuellen kolorimetrischen Methode, um zu bestimmen, wird eine orange-gelbe Farbe erzeugt, wenn das Restchlor groß ist. Wenn die Alkalität der Wasserprobe zu hoch ist und das Restchlor klein ist, wird eine hellgrüne oder hellblaue Farbe erzeugt. Zu diesem Zeitpunkt können 1 ml O-Tolidin-Standardlösung hinzugefügt werden, um eine normale hellgelbe Farbe zu erzeugen.
71. Was sind die Unterschiede zwischen der biologischen Phase der Biofilmmethode und dem aktivierten Schlamm?
Die biologischen Phaseneigenschaften des Biofilmbehandlungssystems unterscheiden sich von denen des aktivierten Schlammprozesses, hauptsächlich in Bezug auf mikrobielle Spezies und Verteilung.
Im Allgemeinen sind aufgrund der allmählichen Veränderung der Wasserqualität und der Verbesserung der Umweltbedingungen für mikrobielles Wachstum die Arten und Mengen von Mikroorganismen im Biofilmsystem mehr als diejenigen im aktivierten Schlammprozess, und die Nahrungskette ist lang und komplexer, insbesondere der Anstieg der Anzahl von Filamentpilzen, Protozoen und Metazoen, und es gibt auch. Algen können in den Bereichen auftreten, die Sonnenlicht ausgesetzt sind, und Insekten wie Filterfliegen können ebenfalls erscheinen. Die Verteilungsmerkmale sind so, dass entlang der Dicke des Biofilms (von der Oberfläche nach innen) oder der Richtung des Einflusses (unterschiedliche Kontaktzeit mit dem Einfluss) die Typen und Mengen der Mikroorganismen große Unterschiede zeigen. In der ersten Stufe der mehrstufigen Behandlung oder im oberen Teil der Abwärtsströmungsfüllerschicht wird das Biofilm häufig von flockigen Bakterien dominiert, und die Filmdicke ist ebenfalls relativ groß (2-3 mm); Mit der Zunahme der Anzahl der Stufen oder des unteren Teils der Abwärtsströmungsfüllerschicht, da die Wasserqualität teilweise behandelt wurde. Die Arten von Mikroorganismen nehmen zu, aber die Dicke des Biofilms nimmt ständig ab (1-2 mm). Die Mikroorganismen auf der Oberfläche des Biofilms sind alle aerob, und mit zunehmender Dicke werden die Mikroorganismen allmählich fakultativ oder sogar anaerob.
Das Biofilm ist auf das Filtermaterial oder den Füllstoff festgelegt, und die biologische feste Retentionszeit SRT (Schlammalter) ist lang, sodass sie mit einer langen Generation und einer sehr geringen Proliferationsrate, wie z. Eine große Anzahl filamentöser Bakterien kann auch auf dem Biofilm auftreten, aber Schlammmüll tritt nicht auf. Im Vergleich zur Aktivitätsschlammmethode ist der Anteil der tierischen Ernährung in den Organismen des Biofilms größer, die Überlebensrate von Mikroanimals ist ebenfalls höher und kann Organismen auf hoher Nährstoffebene bewohnen. Oligochaeten und Insekten leben über räuberischen Ciliaten, Rotiferen und Nematoden. Daher ist die Nahrungskette am Biofilm länger als die Nahrungskette im aktivierten Schlamm, weshalb die von der Biofilm -Methode erzeugte Menge Schlamm geringer ist als die der aktivierten Schlammmethode.
Die charakteristischen Mikroorganismen auf jeder Ebene oder jeder Füllschicht unterscheiden sich aufgrund der unterschiedlichen Abwasserqualität, dh Veränderungen der Wasserqualität verursachen Änderungen der Typen und der Anzahl der Mikroorganismen im Biofilm. Wenn die Einflusskonzentration zunimmt, kann beobachtet werden, dass sich die charakteristischen Mikroorganismen der ursprünglichen Ebene nach unten bewegen, dh die Mikroorganismen, die ursprünglich auf der vorderen Ebene oder auf der oberen Füllstoffschicht auf der Rückstufe oder der unteren Füllschicht erscheinen können. Daher können ähnliche Veränderungen durch biologische Phasenbeobachtung beobachtet werden, um Veränderungen der Abwasserkonzentration oder Schlammbelastung zu schließen.
72. Was bedeutet der gesamte Bakterienzählindikator in Wasser?
Die Gesamtzahl der Bakterien bezieht sich auf die Anzahl der in 1 ml Wasserprobe in Nährstoffagarmedium gezüchteten Kolonien nach kultivierter Kultivierung bei 37 ° C. Die Messeinheit ist im Allgemeinen die Gesamtzahl der in jeder ml Wasser enthaltenen Bakterien. Die Gesamtzahl der Bakterien in Wasser hängt häufig mit dem Grad der organischen Verschmutzung im Wasserkörper zusammen und ist einer der wichtigsten Indikatoren für die Bewertung des Grades der Wasserverschmutzung und des möglichen Schadens für den menschlichen Körper.
Die Analysemethode der Gesamtzahl der Bakterien verwendet die Standardplattenmethode, um die Bakterien in der Wasserprobe zu zählen. Dies ist eine Methode zur Bestimmung der Dichte von aeroben und fakultativen anaeroben heterotrophen Bakterien in Wasser. Da jedoch keine Nährstoffbasis oder ein Umweltbedingung den physiologischen Anforderungen aller Bakterien in einer Wasserprobe erfüllen kann und Bakterien in Wasser in Form von Einzelpersonen, Paaren, Ketten, Clustern oder Clustern vorhanden sind, ist die gemessene Koloniezahl tatsächlich niedriger als die Anzahl der Bakterien, die tatsächlich in der getesteten Wasserprobe überleben.
73. Was sind die Vorsichtsmaßnahmen für die Bestimmung der Gesamtzahl der Bakterien?
Verwenden Sie die aseptische Betriebsmethode, um 1 ml Wasserprobe oder 2 bis 3 verdünnte Wasserproben mit geeigneten Verdünnungsmultiplikeln zu absorbieren, in die sterilisierte Platte zu injizieren. Gießen Sie dann 15 ml Nährstoffagarmedium und mischen Sie sie gründlich mit dem Wasserproben.
Nach der Kultur sollte die Anzahl der Plattenkolonie sofort durchgeführt werden. Wenn die Anzahl verschoben werden muss, kann die Platte in einer Umgebung von 5-10 ° C, jedoch nicht länger als 24 Stunden, gespeichert werden, und diese Praxis sollte nicht als Routine-Betriebsmethode verwendet werden.
Wenn Sie die Plattenkolonien zählen, können Sie mit dem bloßen Auge beobachten. Verwenden Sie, um Auslassungen zu verhindern, um nach Bedarf ein Lupenglas zu prüfen. Für die Kolonien, die ähnlich aussehen und nahe beieinander sind, aber nicht berührend sind, solange die Entfernung geringer ist als der Durchmesser der kleinsten Kolonie, sollten sie getrennt gezählt werden. Die Kolonien, die in engem Kontakt stehen, aber unterschiedliche Erscheinungen (Morphologie oder Farbe) haben, sollten auch separat gezählt werden.
Bei der Berechnung der durchschnittlichen Koloniezahl der gleichen Verdünnung sollte bei einem der Platten wachsende Flockenkolonien nicht verwendet werden, und die Platte ohne Flockenkolonien sollte als Koloniezahl der Verdünnung verwendet werden. Wenn die Flockenkolonien weniger als die Hälfte der Platte sind und die Verteilung der verbleibenden Kolonien sehr einheitlich ist, kann die Koloniezahl von 1/2 der Platte mit einheitlichem Wachstum mit 2 multipliziert werden, um die Koloniezahl der gesamten Platte darzustellen.
Das Ergebnis der Gesamtzahl der Bakterien ist die Gesamtzahl der Kolonien in jeder Platte oder die durchschnittliche Anzahl von Kolonien in parallelen experimentellen Platten derselben Verdünnung multipliziert mit dem Verdünnungsschwerpunkt. Wenn das Endergebnis innerhalb von 100 liegt, wird das Ergebnis gemäß der tatsächlichen Anzahl der Kolonien erfasst. Wenn es größer als 100 ist, werden zwei signifikante Zahlen verwendet und als Exponent von 10 ausgedrückt. Wenn die Anzahl der Kolonien nicht gezählt werden kann, sollte das Verdünnungsschwerpunkt bei der Meldung des Ergebnisses beachtet werden.
74. Wie berechnet man die Gesamtzahl der Bakterien in einer Wasserprobe basierend auf dem Ergebnis der Kolonie?
Bei der Berechnung der Testergebnisse der Gesamtzahl der Bakterien ist es erforderlich, basierend auf der durchschnittlichen Anzahl von Kolonien in verschiedenen Verdünnungen zu vergleichen und zu berechnen. Die Methode lautet wie folgt:
⑴ Wählen Sie zunächst den Fall aus, in dem die durchschnittliche Anzahl der Kolonien zwischen 30 und 300 für die Berechnung liegt. Wenn die durchschnittliche Anzahl von Kolonien in nur einer Verdünnung auf diesen Bereich entspricht, wird die durchschnittliche Anzahl von Kolonien multipliziert mit ihrem Verdünnungsschwerpunkt als Ergebnis der Gesamtzahl der Bakterien in der Wasserprobe verwendet.
⑵ Wenn die durchschnittliche Anzahl von Kolonien in zwei Verdünnungen zwischen 30 und 300 liegt, sollte die Berechnungsmethode gemäß dem Verhältnis der beiden bestimmt werden. Wenn das Verhältnis weniger als 2 beträgt, wird der Durchschnitt der durchschnittlichen Koloniezahl multipliziert mit dem Verdünnungsschwerpunkt als Ergebnis der gesamten Bakterienzahl der Wasserprobe verwendet. Wenn das Verhältnis größer als 2 ist, muss der kleinere der durchschnittlichen Kolonenzahl multipliziert mit seinem Verdünnungsschwerpunkt als Ergebnis der gesamten Bakterienzahl der Wasserprobe verwendet werden.
⑶ Wenn die durchschnittliche Koloniezahl aller Verdünnungen größer als 300 beträgt, wird die durchschnittliche Koloniezahl der größten Verdünnung mit mehreren multiplizierten Multiplikationen mit mehreren Verdünnung als Ergebnis der gesamten Bakterienzahl der Wasserprobe verwendet.
⑷ Wenn die durchschnittliche Koloniezahl aller Verdünnungen weniger als 30 beträgt, wird die durchschnittliche Koloniezahl der kleinsten Verdünnung mit mehreren multiplizierten Multiplizierungen mit mehreren Verdünnung als Ergebnis der Gesamtbakterienzahl der Wasserprobe verwendet.
⑸ Wenn die durchschnittliche Koloniezahl aller Verdünnungen nicht zwischen 30 und 300 liegt, wird die durchschnittliche Koloniezahl von 30 oder 300 multipliziert mit ihrem Verdünnungsschwerpunkt als Ergebnis der Gesamtbakterienzahl der Wasserprobe verwendet.
75. Was bedeutet die coliforme Anzahl (Wert)?
Coliforme Bakterien beziehen sich auf eine Klasse von aeroben oder fakultativen anaeroben, laktose-fermentierenden, gramnegativen, sporenfreien Stäben, sodass sie manchmal auch als Fäkalkoliformen oder Escherichia coli bezeichnet werden. Coliforme Bakterien können nach 24 Stunden bei 37 ° C in Laktosemedium Säure und Gas produzieren. Die Anzahl (Wert) von coliformen Bakterien wird im Allgemeinen in der Anzahl der in 1l oder 100 ml Wasser enthaltenen coliformen Bakterien gemessen.
Wenn die Wasserquelle durch Kot kontaminiert ist, kann sie durch Darmpathogene kontaminiert werden und intestinale Infektionskrankheiten verursachen. Da Darmpathogene einen relativ geringen Anteil der Anzahl der Mikroorganismen ausmachen, ist es oft sehr schwierig, Krankheitserreger von Wasser, insbesondere von Leitungswasser, zu trennen. Coliforme Bakterien sind die häufigste und größte Art von Bakterien bei intestinalen aeroben Bakterien, sodass sie häufig als Indikatorbakterien für die Fäkalverschmutzung verwendet werden. Das heißt, die Anzahl der coliformen Bakterien im Wasser wird verwendet, um zu beurteilen, ob die Wasserquelle durch Kot kontaminiert ist, und die Möglichkeit zu schließen, dass die Wasserquelle durch Darmpathogene kontaminiert wird.
76. Was sind die Methoden zur Bestimmung der Anzahl der coliformen Bakterien?
Es gibt zwei häufig verwendete Methoden zur Bestimmung der gesamten coliformen Bakterien: Multi-Rohr-Fermentationsmethode und Membranfiltermethode.
Die Multi-Rohr-Fermentationsmethode basiert auf den Eigenschaften von coliformen Bakterien wie Lactosefermentation, gramnegativer Färbung, ohne Sporen und stäbchenförmig. Es wird durch drei Schritte getestet, um die Gesamtzahl der coliformen Bakterien in der Wasserprobe zu bestimmen. Die Multi-Tube-Fermentationsmethode verwendet die wahrscheinlichste Zahl, um die experimentellen Ergebnisse auszudrücken, auch als MPN bezeichnet. Es handelt sich tatsächlich um eine Methode zur Schätzung der Dichte und der sanitären Qualität von E. coli in Gewässern, die auf der statistischen Theorie basieren. Diese Schätzung ist in der Regel größer als die tatsächliche Zahl. Der geschätzte Wert der coliformen Anzahl wird durch die Verdünnung bestimmt, die sowohl positive als auch negative Ergebnisse zeigt. Bei der Gestaltung der Anzahl der Wiederholungen, die für Wasserprobentests erforderlich sind, sollte sie auf der Genauigkeit der erforderlichen Daten basieren.
Die Membranfiltermethode verwendet eine spezielle sterilisierte mikroporöse Membran, um die Wasserprobe zu filtern. Nachdem die Bakterien auf der Membran eingeschlossen sind, ist die Membran an das Fuchsin -Natriumsulfit -Kulturmedium für die Kultur gebunden. Da coliforme Bakterien Lactose fermentieren können, erscheinen lila-rote Kolonien mit metallischem Glanz nach Kultivierung auf der Filtermembran. Durch die Zählung der Anzahl der Kolonien mit dieser Eigenschaft auf der Filtermembran kann die Anzahl der in jedem Liter Wasser enthaltenen coliformen Bakterien berechnet werden. Die Filtermembranmethode kann ein größeres Volumen an Wasserproben messen und schneller Ergebnisse erzielen als die Multi-Röhren-Fermentationsmethode, aber der Effekt ist schlecht, wenn die Trübung hoch ist und die Dichte von Nicht-E ist. Coli -Bakterien sind hoch.
77. Was ist Restchlor?
Residual Chlor ist das Chlor, das im Wasser verbleib, nachdem das Wasser für einen bestimmten Zeitraum mit Chlor desinfiziert wurde. Seine Funktion ist es, die kontinuierliche bakterizide Fähigkeit aufrechtzuerhalten. Ab dem Zeitpunkt, an dem das Wasser in das Rohrnetz bis zum Wasserpunkt eintritt, muss die Wirkung des Desinfektionsmittels im Wasser aufrechterhalten werden, um mögliche Schäden und Wiederherstellungen für Erreger zu verhindern. Dies erfordert, dass die Menge an Desinfektionsmitteln, die dem Wasser hinzugefügt wurden, nicht nur den Bedürfnissen des Tötens von Krankheitserregern im Wasser erfüllen sollte, sondern auch eine bestimmte Menge an Restbetrag beibehält, um das Wiederverwachsen von Krankheitserregern während des Wassertransportprozesses zu verhindern. Wenn eine Chlor -Desinfektion verwendet wird, ist der Teil des Desinfektionsmittels, der den zu diesem Zeitpunkt zu diesem Zeitpunkt den Desinfektionsbedarf überschreitet, ein Restchlor.
Restchlor hat zwei Formen: freies Restchlor (CL2, HoCl und OCL-) und kombiniertes Restchlor (NH2CL, NHCL2 und NCL3). Diese beiden Formen können gleichzeitig in derselben Wasserprobe existieren, und die Summe der beiden wird als Gesamtreste Chlor bezeichnet. Freies Restchlor hat eine starke bakterizide Fähigkeit, ist jedoch leicht zu zersetzen. Das kombinierte Restchlor hat schwache bakterizide Fähigkeiten, dauert jedoch länger im Wasser. Im Allgemeinen, wenn es kein Ammoniak oder Ammonium im Wasser gibt, ist das restliche Chlor freies Residuenchlor, während beim Ammoniak oder Ammonium im Wasser das restliche Chlor normalerweise nur kombiniertes Restchlor enthält und manchmal restlich Chlor und kombiniertes Restchlor -Chlor miteinander existieren. Die Menge an Restchlor muss angemessen sein. Zu niedrig spielt keine Rolle bei der Verhinderung und Behandlung von Krankheitserregern. Zu hoch wird nicht nur die Desinfektionskosten erhöht, sondern kann auch den menschlichen Körper schädigen, wenn sie mit dem menschlichen Körper in Kontakt stehen.
Konzeptionell bezieht sich das Restchlor auf Desinfektionsmittel der Chlorgas und Chlorreihen. Bei der Verwendung anderer Nichtchlor-Desinfektionsmittel wie Chlordioxid sollte das Restchlor als das verbleibende Desinfektionsmittel verstanden werden, der nach einer bestimmten Kontaktzeit im Wasser gelassen wird.
78. Was sind die Methoden zur Bestimmung von Restchlor? Was sind ihre jeweiligen Anwendungsbereiche?
The determination of residual chlorine can be carried out by iodine titration, o-tolidine visual colorimetry, N,N-diethyl-p-phenylenediamine (DPD) ferrous titration (GB 11897-89), N,N-diethyl-p-phenylenediamine spectrophotometry (GB 11898-89), etc. The iodine titration method can only determine the total Restchlor in der Wasserprobe; Die O-Tolidin-Visual-Colorimetrie-Methode kann das gesamte Restchlor bzw. das freie Restchlor durch Ändern des Betriebsverfahrens bestimmen. Die N-Diethyl-P-Phenylendiamin-Titrationsmethode oder die Spektrophotometrie-Methode kann das freie Chlor oder das Gesamtchlor im Konzentrationsbereich von 0,03-5 mg/l bestimmen, und durch Ändern des Betriebsverfahrens können Monochloramin, Dichloramin und einige kombinierte Chlorkomponenten jeweils ebenfalls bestimmt werden.
Die Iodtitrationsmethode eignet sich für Wasserproben mit einem gesamten Restchlorgehalt von mehr als 1 mg/l und ist eine häufig verwendete Methode zur Bestimmung der Menge an zugesetztem Chlor. Die o-tolidin visuelle kolorimetrische Methode ist einfach zu bedienen und ist eine übliche Methode zur Bestimmung des Restchlors in Trinkwasser. Der Messbereich beträgt 0,01-10 mg/l. Die N-Diethyl-P-Phenylendiamin-Titrationsmethode oder die Spektrophotometriemethode weist eine hohe Empfindlichkeit auf und kann Wasserproben mit geringem Restchlorgehalt bestimmen. Es ist geeignet, um das gesamte verfügbare Chlor in Abwasser zu bestimmen, das organische Substanz enthält. Die Messbereiche der beiden Methoden betragen 0,05-1,5 mg/l bzw. 0,03-5 mg/l.